1. 概述

常间回文重复序列丛集(Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats, CRISPR)及其关联蛋白(CRISPR-associated proteins, Cas)系统作为一类新型基因组编辑技术，相对于成本较高的锌指核酸酶(Zinc Finger Nucleases, ZFNs)技术和操作周期较长、编辑效率较低的转录激活子样效应因子核酸酶(Transcription Activator-Like Effector Nucleases, TALENs)技术，具有经济效益高、编辑简便、缩短操作时间等优点 [1] 。更为重要的是，CRISPR/Cas系统因缺乏稳定的整合，降低了其随机插入宿主基因组引起意外突变的可能性 [2] 。相比于ZFNs和TALENs基因编辑技术，CRISPR/Cas技术可以敲除多倍体植物中的等位基因从而产生更显著的表型效应 [3] [4] 。具体而言，CRISPR/Cas技术的优势可以归纳为三个方面。(1) 精准性：CRISPR/Cas技术使用可编辑的RNA序列引导Cas蛋白对目标基因进行切割，从而实现靶标基因的敲除。这种高度精准的靶向性使得CRISPR/Cas技术可以选择性地敲除特定的等位基因，且不会对其他基因造成影响。这种精准性有助于产生更明显的表型变化；(2) 高效性：CRISPR/Cas技术能够在短时间内同时对多个基因进行编辑，实现基因的快速敲除和高效基因编辑，能快速观察到表型变化；(3) 灵活性：CRISPR/Cas技术可通过引入外源DNA片段来恢复被敲除的等位基因，即等位基因的敲除过程是可逆的，这使得CRISPR/Cas技术更加灵活。因此，CRISPR/Cas系统成为当今基因编辑和纠正基因突变的主流技术。

CRISPR/Cas系统的发现为人类重特大遗传疾病的基因组治疗及抗逆品种培育和微生物基因组改造带来了曙光。CRISPR/Cas技术的发展历程大致经历六个阶段 [5] 。第一阶段为CRISPR/Cas系统萌芽期：上个世纪50年代DNA双螺旋的提出为微生物遗传学即生物化学的发展奠定了基础。该阶段代表性人物包括莱德伯格、科恩伯格、桑格三位大师级科学家；第二阶段为CRISPR/Cas系统发展初期：上个世纪70年代末桑格测序为细菌CRISPR/Cas系统的测序提供了技术支撑；第三阶段为CRISPR/Cas系统缓慢发展期：21世纪初发现多种微生物存在特异性CRISPR序列及其附近的多个编码区相关Cas；第四阶段为CRISPR/Cas系统转折期：2005年首次证实CRISPR/Cas是细菌获得性免疫系统，2008年发现CRISPR序列可转录加工非编码RNA并介导外源核酸的干扰；第五阶段为CRISPR/Cas系统快速发展期：2012年CRISPR/Cas9系统实现靶向DNA双链剪切从而达到基因编辑的目的；第六阶段为CRISPR/Cas系统的广泛应用期。详见图1。

2. CRISPR/Cas系统机理

CRISPR/Cas系统是多数细菌及古菌等原核生物为抵御外来的核酸长期进化形成的由crRNA引导的Cas蛋白效应复合物以裂解外来入侵的核酸形成适应性免疫系统 [6] [7] 。即CRISPR是多数古菌和细菌在环境胁迫下后天获得的一套能够识别和抵御噬菌体侵染的防御系统——获得性免疫系统 [6] [7] 。当噬菌体攻击宿主细胞时，CRISPR利用宿主细胞的识别功能形成干扰噬菌体的特异性蛋白，再利用宿主特异性蛋白识别对噬菌体DNA片段敏感的Cas蛋白，最终将所识别的外源DNA进行切割分离 [6] 。CRISPR/Cas系统包括Cas蛋白与单链引导RNAs (single guide RNAs, sgRNAs)两个核心元件 [6] 。其中Cas蛋白元件受特异性的单链引导RNA (gRNAs)元件指引靶向DNA位点；再利用作为“剪刀”的Cas蛋白切割分离外源靶向的核酸序列 [6] 。详见图2。

CRISPR/Cas系统主要由CRISPR序列和Cas蛋白组成。CRISPR序列是由细菌和古菌等原核生物基因组内抵御噬菌体侵染产生的一段重复序列。Cas蛋白是一种核酸内切酶，通过sgRNA指引到前间隔序列邻近基序(Protospacer-Adjacent Motifs, PAM)序列，切割特定的DNA双链形成间隔(spacer)序列 [8] 。详见图3。

基于CRISPR-Cas基因座差异、是否出现Cas基因签名、保守Cas蛋白的系统发育分析及序列相似性，将CRISPR-Cas系统分为6种类型 [9] 。I、III型CRISPR-Cas系统具有一种称为CRISPR相关抗病毒防御复合物的多重效应复合物，而II、V、VI型CRISPR-Cas系统具有单个多结构域效应Cas蛋白 [10] 。CRISPR/Cas系统中常用的Cas蛋白主要有Cas3、Cas10、Cas9、Cas12a、Cas12b与Cas13等 [10] 。其中Cas3、Cas9、Cas12用于编辑DNA，Cas13用于编辑RNA，Cas10既可编辑DNA也可编辑RNA [10] 。Cas蛋白中最常用的是Cas9与Cas12a，CRISPR/Cas9系统作为最常用的Cas核酸酶用于识别富含GC的位点，通过限制PAM不能识别富含AT非编码区 [11] 。CRISPR/Cas12a(又被称为CRISPR/Cpfl)能够识别由单个CRISPR RNA(crRNA)引导的富含AT的PAM序列 [12] 。与CRISPR/Cas9相比，CRISPR/Cas12a往往具有更高的特异性、可操作性，因为Cas12a只需一个RNA分子(crRNA)而Cas9需两个RNA分子(tracrRNA和crRNA) [12] 。此外，Cas12a正在成为另一个强大的基因编辑工具，在核酸检测、疾病建模、基因治疗等方面发挥着重要作用 [12] 。Cas12a的RNase活性可特异性处理crRNA阵列 [13] [14] 。因此，Cas12a有望成为多基因编辑的最佳候选者广泛应用于各种动植物及微生物领域 [12] 。Cas13专门识别和切割单链RNA、其裂解由真核生物和原核生物的两个核苷酸结构域介导的 [15] 。Mahas等和Wada等先后发现CRISPR/Cas13系统切割病毒RNA能增强植物对RNA病毒的免疫力 [16] [10] 。CRISPR-Cas系统的类型及其应用特性见表1。

注：crRNA: CRISPR RNA，常间回文重复序列丛集RNA；tracrRNA: transactivating crRNA，反转录激活常间回文重复序列丛集RNA。

适配体作为重要的靶向剂在CRISPR/Cas系统进行靶向识别的过程中扮演重要角色。其作用机制是通过识别结合、切割两个阶段帮助Cas蛋白进行靶向识别。在识别结合阶段，适配体通过与靶标基因进行高度特异性互补配对形成稳定的复合物，即适配体能够准确地识别并结合到靶标基因上。一旦适配体与靶标基因结合，Cas蛋白就会被引导到结合位点，发挥其核酸酶活性来切割靶标基因导致DNA断裂，促使细胞启动自身修复机制，从而实现基因组的编辑或修复。与抗体相比，适配体拥有更好的耐热性，具有操作简单、防止过度免疫、容易改良、作用效果温和等优点，有利于适配体的大规模制备。最新的研究表明，富集适配体可提升CRISPR/Cas系统中传感器的功效 [17] 。目前筛选适配体是基于指数富集适配体的系统进化(Systematic Evolution of Ligands by Exponential Enrichment, SELEX)过程进行正向选择和负向选择。筛选适配体主要包括四个步骤。第一步将含有靶向分子的大量随机寡核苷酸库进行孵育，第二步通过洗脱将未与特定靶向分子结合的序列淘汰；第三步通过聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)扩增与特定靶向分子结合的序列；第四步通过反向靶标分子筛选与靶标分子特异性结合。以上四步骤反复多次(最多15次)直至筛选出高亲和力、高度特异性的适配体。详见图4。

3. CRISPR/Cas系统的研究进展与应用

CRISPR/Cas系统作为基因编辑工具在治疗人类遗传疾病方面已经取得了重要进展，多种基因药物已投入到临床试验中 [18] 。随着CRISPR/Cas技术的快速发展，基因组编辑技术开始广泛运用于植物育种等相关研究中 [20] 。研究人员通过CRISPR/Cas技术对植物基因组片段定点插入替换、基因表达调控和表观基因组修饰等使植物获得抗病性、抗虫性等性状 [19] 。此外，CRISPR/Cas技术也广泛应用于微生物领域 [20] 。例如研究人员通过CRISPR/Cas系统对微生物进行基因编辑，将微生物底盘细胞进行改造，或者通过研发新的底盘细胞，将微生物与特定生物功能绑定 [20] 。

3.1. CRISPR/Cas技术在临床治疗中的应用

自2019年新型冠状病毒(SARS-CoV-2)席卷全球以来，SARS-CoV-2给全球人民带来了伤痛与恐慌。相比于SARS-CoV，SARS-CoV-2种S-蛋白的Furin酶切位点其感染性显著增强 [21] 。尽管过去几年的时间新冠病毒一直在突变进化，但Furin酶切位点却一直保留，成为病毒大流行的一大特征。为快速检测SARS-CoV-2，CRISPR/Cas技术在病毒检测方面取得进展 [21] 。例如，Azhar等基于CRISPR-Cas9系统开发了一种FnCas9 (一种Cas9的同源物)编辑检测SARS-CoV-2的方法，即FELUDA法 [21] 。FELUDA无需对报告分子进行反式裂解，直接使用Cas9的消化来检测SARS-CoV-2核酸，其特异性和敏感性分别高达98%和96%，且能更准确地检测致病性单核苷酸变异 [21] 。Yoshimi等基于Cas3的附带单链DNA裂解活性开发了一种快速(40分钟内)、低成本、无需仪器的SARS-CoV-2检测方法，名为CONAN方法 [22] 。CONAN不仅能检测临床样本中的SARS-CoV-2，还能特异性地检测A型流感病毒的单碱基对突变。Chan等基于Cas12与Cas13研发了CRISPR Dx工作系统。该系统通过RNA提取、逆转录、靶点扩增、Cas分析和侧支裂解活性检测，对拭子、唾液等样本中提取的RNA进行检测 [23] 。Chen等将光学传感技术-表面等离子体共振(SPR)与CRISPR技术相结合，提升了不同毒株检测的灵敏性和特异性，大大缩短了样品检测时间，有利于无症状感染者与病毒携带者的早期检测 [24] 。

CRISPR-Cas系统作为一种抗病毒剂在抗击COVID-19新冠肺炎中发挥了关键作用。Wang等提出了两种潜在的治疗方案 [25] 。方案一是在感染SARS-CoV-2的早期阶段用CRIPSR-Cas13a根除病毒基因组，同时附带裂解活性的Cas13a可引起感染细胞凋亡 [25] 。方案二是在感染SARS-CoV-2后期用CRISPR-Cas13a减少病毒蛋白的合成，但对宿主细胞没有细胞毒性作用 [26] 。CRISPR-Cas系统作为一种抗病毒剂，首先需要在活体细胞中进行病毒的检测 [25] 。第二必须建立一种安全有效的CRISPR-Cas体内传送系统(例如AAV、脂质纳米颗粒、化学聚合物、两亲多肽和脂质体)将其安全传递到人类靶标上皮细胞 [26] 。第三必须优化传送的剂量和时间以确保CRISPR-Cas系统在宿主细胞中充分表达 [23] 。最后，CRISPR-Cas系统在动物模型中确保安全后方可进行临床试验 [25] 。

CRISPR/Cas作为靶向治疗的关键技术，为许多疾病的治疗提供了可靠有效的解决方案。Chen等 [26] 通过CRISPR/Cas13靶向单链RNA分子和介导RNA切割，开发了CRISPR/Cas系统用以抵御胞内寨卡病毒感染，发现该系统对Zika感染高度敏感 [26] 。该系统运用Cas13b-GFP融合表达载体，将CRISPR基因在293T-DC-SCGN(树突状细胞特异性细胞间粘附分子-3抓取非整合素的293T细胞系)细胞质中表达，能够对Zika的感染进行靶向抑制 [26] 。

此外，CRISPR/Cas已在治疗顽固性疾病方面取得新的突破。Park等将CRISPR/Cas9系统通过磁力引导至心脏中开发了治疗心肌梗死的CRISPR/Cas9磁质体，对心脏中的靶向miR34a基因进行编辑，从而改善了心脏功能，提升了心脏的自我修复与再生能力 [27] 。RISPR/Cas9磁质体为预防心肌梗死和治疗心力衰竭等疾病提供了全新的科学方案。

3.2. CRISPR/Cas技术在植物基因编辑中的应用

CRISPR/Cas技术已在植物抗旱、抗盐等方面取得新的进展。Kim等运用CRISPR/Cas技术对小麦脱水响应元件TaDREB2和TaERF3进行编辑，提高了小麦的抗旱性 [28] 。Tran等研究发现番茄杂交富脯氨酸蛋白1(HyPRP1)是盐胁迫的负向调控因子，并开发了基于CRISPR/Cas9精确编辑HyPRP1蛋白结构域的系统，该系统可通过靶向消除SlHyPRP1负向响应域(s)以提高萌发和营养阶段的番茄对高盐的耐受性 [29] 。Kieu等基于CRISPR/Cas9创建了S基因敲除和诱导隐性抗性方法，通过观察7个马铃薯损伤大小、感染叶片的百分比和幼苗形态来评估四等位基因缺失突变体的抗性，发现该系统能够提高马铃薯对大肠杆菌的抗性 [30] 。Schubert等于2007年发现易突变的马铃薯病毒(PVY)是对马铃薯最具破坏性的病毒病原体 [31] 。Zhan等通过敲除病毒RNA转录本成功获取多种PVY抗性菌株，证实CRISPR/Cas系统可提高马铃薯的耐受性 [32] 。

CRISPR/Cas技术在调节植物基因表达和修复环境方面也发挥作用。特别是CRISPR/Cas9介导的精确基因组编辑技术在开发植物新品种方面展示出巨大的潜力。Li等利用CRISPR/Cas介导的同源定向修复(homology-directed repair，HDR)将具有亲缘关系的其他作物的优良基因作为目标基因进行靶向替换，优化了作物品种 [33] 。An等利用CRISPR/Cas12a系统对植物PDS基因的多个靶点进行靶向敲除，培养出稳定的目标性状，可抵抗诸多环境胁迫 [34] 。Khumsupan等选择拟南芥作为模式生物，结合现已开发的CRISPR/Cas系统提高了作物的光合作用 [35] 。可见，基于CRISPR/Cas系统的植物编辑技术不仅为培育优质的环境修复植物提供了可行方案，又对改善环境具有重大意义。

3.3. CRISPR/Cas技术在微生物基因改造中的应用

人类大多数疾病都与微生物的参与密切相关。Ghosh等利用CRISPR/Cas技术将特异基因位点整合到病原菌中 [17] ，通过靶向编辑干扰病原菌生物膜的形成，最终干扰病原菌产生耐药性 [36] 。

药物的生产也离不开微生物的参与。Liu等利用细菌菌株ATCC 25795胞内CRISPR/Cas12a高效精准的基因编辑系统开发了一种甾体类药物 [37] 。该系统通过CRISPR-Cas12a与自杀质粒介导的传递系统相结合，再利用双质粒系统成功将目标基因整合到目标基因组位点上，最终通过靶向清除实现靶向基因组突变，从而获得更高的药效。

自然界中许多植物与病原微生物存在密切关系。Mu等开发了一种基于CRISPR/Cas12a的新型基因检测方法，可将小麦镰刀菌与其他病原真菌进行有效区分，其原理是利用目标基因特异性PCR扩增和gRNA杂交的双重识别过程先将从样本中放大，再将放大的目标基因与CRISPR/Cas系统中的探针配对，最终通过是否发生特定的Cas蛋白剪切来判断是否存在小麦镰刀菌。该法用时4天即可实现小麦中镰刀菌(Fusarium graminearum)的快速诊断，为及早防治镰刀菌感染引起的小麦镰刀枯萎病提供了有效的分子诊断技术 [38] 。

4. CRISPR/Cas系统的缺陷

4.1. 脱靶问题

尽管CRISPR/Cas技术在人类疾病治疗、植物抗逆品种培育、微生物基因组改造等方面发挥巨大作用，但CRISPR/Cas技术仍存在脱靶的风险 [7] [39] 。尽管效应复合物可以有效识别靶标基因组序列，但仍存在不完全匹配的序列—脱靶。高通量测序技术发现，单链引导sgRNA一旦出现脱靶问题，基因组内会出现不可控的突变 [7] [39] 。CRISPR/Cas技术在治疗人类疾病过程中脱靶问题将会引起人类关键功能基因丢失重排甚至表达障碍，编辑后的基因组就会出现无法探知的风险，给人类健康带来巨大的安全隐患。因此脱靶问题大大限制了CPISPR/Cas技术的广泛应用。为此，Handelmann等针对Cas9可能出现的脱靶效应，进行了基因编辑器错配核小体抑制试验(GEMiNI-seq)，发现Cas9对核小体中的靶向序列和错配序列具有不同的亲和力 [40] 。这为进一步解决Cas9脱靶问题提供了研究方向。

4.2. 缺乏载体

CRISPR/Cas系统因缺乏稳定的载体极大限制了CRISPR/Cas系统的正常功能。开发稳定的载体成为当前亟待解决的问题。Wang等开发了MnO₂纳米载体，并将CRISPR/Cas12a系统的全部组件加载到MnO₂纳米载体上 [41] 。细胞中CRISPR/Cas12a系统的快速释放时分解产生的Mn²⁺作为促进剂，促进细胞内生物传感基因的递送和表达，规避CRISPR/Cas系统缺乏稳定载体的问题。因此MnO₂纳米载体作为新型材料给开发升级CRISPR/Cas系统带来新的希望。

5. 总结与展望

CRISPR/Cas系统的作用机理是Cas系列蛋白在单链向导RNA的指引下，通过PAM序列对靶向DNA进行基因改造，进而定向引导基因突变，通过测序技术筛选有效的基因突变。尽管CRISPR/Cas技术存在脱靶和缺乏载体等问题，但最新的研究为开发升级CRISPR/Cas系统带来希望的曙光。本文综述CRISPR/Cas技术在临床治疗、植物基因编辑与微生物基因改造等主要领域的最新进展和应用。

CRISPR/Cas技术在环境微生物领域的研究尚在起步阶段。作为基因组的高效工具，CRISPR/Cas技术在许多领域具有巨大的开发潜力。相信在未来，在研究人员们的通力合作下，CRISPR/Cas技术的瓶颈问题会被突破。CRISPR/Cas技术有望在未来用于环境微生物基因组改造，对三废污染物进行生物降解和资源化回收利用并生产合成可降解的微生物塑料、单细胞蛋白、微生物肥料、微生物燃料和能源等高附加值生态友好型产品。CRISPR/Cas技术有望在缓解能源危机和资源短缺及农业、工业、医药、环保等领域发挥意想不到的作用。

基金项目

国家自然科学基金地区项目“高通量测序解析乳房–肠道–环境菌群与奶牛乳房炎关联性”(31660724)；内蒙古自然科学基金项目“草畜系统食源性菌群调控牛乳菌群的分子生态机制研究”(2021MS03005)；鄂尔多斯市科技重大专项基金项目“基于组织相容性抗原(MHC)的多态性对牛羊副结核病防控技术的开发和应用”(2022EEDSKJZDZX025)。

NOTES

^*第一作者。

^#通讯作者。

参考文献