正硅酸四乙酯(TEOS, 98.0%)，磷酸三乙酯(TEP, 99.8%)，四水硝酸钙(Ca(NO₃)₂∙4H2O, >98%)，盐酸(HCl, 36~38%)，无水乙醇(CH3CH2OH, ≥99.7%)，(3-氨丙基)三乙氧基硅烷(APTES, ≥98.0%)，1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚胺盐酸盐(98%)，六水合硝酸亚铈(Ce(NO)3∙6H2O, 99%)，氨水(NH4OH, 25~28%)，柠檬酸，无水(99.5%)和过氧化氢(H₂O₂, ≥30%)均购自于国药集团化学试剂有限公司。聚环氧乙烷–聚环氧丙烷–聚环氧乙烷三嵌段共聚物P123 (≥99%)来自于华东理工大学。3-(丙烷-2,2-二基双(硫烷二基)二丙酸) (TK)购买于为华生物科技有限责任公司。2-(N-吗啉啡)乙磺酸(MES, ≥99%)购买于Sigma-Aldrich。N-甲基丁二酰亚胺(>98.0%)购买于aladdin。

(1) CNPs的制备：

采用水热法制备CNPs [19] 的方法如下：首先，将柠檬酸和六水合硝酸亚铈按照相同摩尔比溶解在去离子水中。然后，把过量的氨水溶液通过注射泵加入上述溶液中。接下来，在温度为50℃的条件下，对混合后的溶液进行24 h的搅拌。上述反应结束后，继续将溶液在80℃的条件下进行24小时的水热处理。反应完成后，向溶液中加入甲醇，以萃取出淡黄色沉淀，并进行离心，用甲醇洗涤沉淀三次。随后，在37℃的条件下进行干燥。最终得到淡黄色的CNPs粉末。

(2) CNPs表面氨基化过程：

将CNPs超声使其均匀的分散在乙醇溶液中，接着滴加一定量的(3-氨丙基)三乙氧基硅烷溶液并搅拌反应24小时(常温下)。反应完成后，对溶液进行离心收集，并用乙醇洗涤两次。随后，将得到的产物进行干燥最终获得修饰氨基后的CNPs-NH₂。

(1) 介孔生物玻璃(MBG)的制备：

应用溶剂诱导挥发自组装(EISA)的方法来制备MBG粉体。首先，称取60克乙醇溶液，在该溶液中加入4克三嵌段共聚物(P123)使其完全溶解，然后依次加入0.73克磷酸三乙酯、6.7克正硅酸四乙酯、1.4克四水硝酸钙和1.0克0.5M盐酸，并在常温下搅拌24小时。待反应结束后，将该混合溶液静置一周以挥发诱导进行自组装从而使其形成干凝胶。接下来，取一定量干凝胶并将其用研钵进行研磨，随后把研磨后的样品置于马弗炉中并1℃/min的速率升温至650℃进行煅烧以除去结构导向剂。经煅烧处理后，将样品置入球磨机进行球磨最终得到MBG粉体。

(2) MBG的表面化学修饰：

把装有150 mL乙醇的三口烧瓶置于油浴锅中并取一定量的MBG粉末使其均匀分散。随后将油浴锅升温至80℃时，逐滴加入一定量的APTES并且回流24 h，将回流后的混合溶液进行离心从而获取白色沉淀并用乙醇洗涤三次，随后在37℃下干燥。即得到修饰氨基后的MBG-NH₂。

利用碳二亚胺法 [20] [21] 进行TK的接枝。在进行该反应之前先制备(MES)缓冲溶液(c = 0.1 M, pH = 5.5)以备用。将4.875 g MES (0.022 mol)溶解于200 mL的DIW中，逐滴加入1 M的NaOH溶液调节pH至5.5，用DIW定容至250 mL，4℃下保存。为了避免TK两端的羧基环状接枝在MBG表面，决定加入与上述APTES等摩尔量的反应物TK。将TK溶解在20 mL MES缓冲液中，加入一定比例的1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚胺盐酸盐(EDC)和N-羟基丁二酰亚胺(NHS)，缓慢避光缓慢搅拌15 min (室温)，随后将氨基化后的MBG分散在其中，避光反应12 h，反应完毕后离心并用DIW洗涤三次置于37℃下干燥，得到表面接枝TK的生物玻璃。

(3) CNPs@MBG的制备：

将2 g的MBG-TK粉体通过超声的手段均匀的分散在一定量的MES缓冲液中，之后加入一定的比例的EDC/NHS活化剂，随后在避光的条件下缓慢搅拌15 min。同时，分别向一定体积MES缓冲液中加入不同质量的CNPs-NH₂粉末并且超声分散。然后将超声后不同浓度的CNPs-NH₂溶液分别加入活化后的MBG-TK溶液中(具体混合比例见 表1 )，在常温下反应12 h，反应过程中需要全程避光处理。最后离心并用去离子水洗涤。通过干燥的手段得到表面锚定不同质量的CNPs的MBG粉体。

利用X-射线衍射仪(XRD, Bruker D8 ADVANCE)对纳米颗粒以及相关粉体进行物相分析；利用傅里叶红外光谱仪(FTIR, SPECTRUM 100)对纳米颗粒以及相关粉体进行化学键和基团的分析；利用Micromerittics Tristar 3020型比表面积仪测试纳米颗粒以及MBG粉体在修饰及锚定前后的N₂吸附–脱附曲线；利用Zetasizer仪器(Malvern)测定纳米颗粒的表面电位和动态光散射粒径；利用场发射透射电子显微镜(HRTEM, FEI TF20/2100F)观察纳米颗粒以及相关粉体微观形貌。

CNPs类CAT酶活性表征：

由于氧化铈颗粒分散在过氧化氢溶液中呈现出黄褐色，影响到过氧化氢在240 nm处的紫外吸收。另外过氧化氢酶具有分解H₂O₂产生氧气的能力，所以采用测试溶液中溶解氧的含量变化来分析CNPs的类CAT的活性。首先将10 mL DIW加入0.102 mL浓度为30%过氧化氢中配置成100 mM的H₂O₂作为基体溶液并按照 表2 中比例以及顺序将不同溶液加入溶氧仪中进行CNPs的CAT酶活性测试。此后，每10 min利用溶解氧测试仪测定溶液中氧浓度，以此来分析CNPs的类CAT活性。

图1(a) 为CNPs的TEM图。从 图1(a) 中可以看出，CNPs的颗粒形状呈现出尺寸均匀的球形且分散性良好。这得益于选择的制备方法为水热法并且选用了柠檬酸作为颗粒生长抑制剂。从 图1(b) 的高分辨率图片可以看出CNPs的晶格条纹清晰，颗粒尺寸大小在4 nm左右，晶面间距为0.201 nm，对比其晶格常数判断为(2 2 0)晶面。与此同时，对修饰前后的CNPs进行动态光散射粒径(DLS)分析( 图1(c)~(d) )。其中PDI值代表了粒子粒径的均匀程度。如 图1(c) ，修饰前的CNPs平均粒径在3.74 nm左右，进一步证实了TEM的结果，PDI = 0.213，这与TEM结果相似。氨基修饰后CNPs平均粒径为5.92 nm，尺寸分布窄，但部分颗粒发生轻微团聚现象，PDI = 0.545有所上升(如 图1(d) )。

在XRD图谱( 图2(a) )中，通过与CeO₂的标准PDF卡片(JCPDS card 43-1002)进行比较，结果发现样品的XRD图谱的特征峰呈现出衍射峰宽化的模式，通过谢乐公式D = Kλ/Bcosθ (D-晶粒尺寸，B-半峰宽)模拟计算得晶粒尺寸为4.10 nm，与TEM的统计结果呈现出一致性，且表面修饰后的CNPs-NH₂颗粒物相没有发生变化。对制备出的CNPs随后又进行XPS分析，结果显示( 图2(b) )初始CNPs中Ce³⁺价态与Ce⁴⁺价态共存，其中Ce⁴⁺占比较高为52.20%，另外CeOx中x = 1.76说明CNPs晶格中存在氧空位。

图1. CNPs的(a) (b)TEM图和(c) (d)修饰前后粒径分布图

晶粒尺寸对于CNPs的催化活性也有所影响，正是由于晶粒尺寸降低从而致使晶格结构内出现氧空位，因而让Ce³⁺与Ce⁴⁺得以共存赋予了其类CAT活性。其催化原理如下反应式所示：2Ce⁴⁺+ H₂O₂== 2Ce³⁺+ 2H⁺+ O₂ [12] ，如 图3(a) 所示，首先向100 mM H₂O₂溶液中加入不同浓度CNPs，结果发现反应溶液的颜色由浅逐步变深，这是由于Ce³⁺溶液为无色而Ce⁴⁺溶液呈橙黄色，由此证明该反应可以逆向进行。并且溶液在5 h后颜色变浅，这进一步的说明了随着反应进行，Ce⁴⁺逐渐转变为Ce³⁺。结果表明，该反应属于可逆反应并且酶的催化活性具有重复性。在实验过程中，发现各组溶液中均出现大量气泡，对其进行了溶解氧测试，结果如 图3(b) 所示，空白组溶液(未添加CNPs)中溶解氧含量维持在5 mg/mL左右，而其他含有不同浓度CNPs的组(CNPs = 10, 20, 30 mM)溶解氧浓度分别达到了31.47 ± 0.15，25.8 ± 0.26，36.47 ± 0.15 mg/L。结果证明CNPs具有良好的抗H₂O₂活性。

随后为了验证其催化反应过程中的价态变化，对CNPs样品又进行了催化H₂O₂反应后的XPS分析如 图3(c) 所示。计算后的结果如 表3 所示。

可以看出，在催化H₂O₂分解后发现，Ce⁴⁺价态占比从52.2%降低至28.15%，x下降至1.64，这说明催化H₂O₂分解过程中引起了氧空位的增加并且导致了Ce⁴⁺向Ce³⁺的转化，进一步证实了催化反应过程。综上分析，可见CNPs具有可以通过可逆的结合氧，使得Ce⁴⁺与Ce³⁺之间可以相互转化，具有氧化还原循环态，可以有效H₂O₂分解，与此同时产生氧气。

从 图4(a) XRD图谱中，可以观察到MBG粉体在2θ = 22˚处仅呈现馒头状衍射宽峰，表明其为非结晶玻璃态 [22] 。孔道表面化学接枝反应并未影响其玻璃物相构成。而在锚定CNPs后，图谱以CeO₂的特征峰(JCPDS card 43-1002)显现出来。由于CNPs@MBG并非简单的单晶结构而是一种无定形和众多小晶粒组成的复合体系，因此CeO₂晶体衍射峰的强度 [23] [24] 基本可以看作是纳米粒子含量的定量分析的指标。由此正如图中CeO₂特征峰中2θ = 28˚处，随着CNPs的含量增加，其衍射峰强度增强。

通过对MBG修饰及CNPs锚定前后进行FT-IR光谱分析(如 图4(b) 所示)，发现整个过程中都存在一些特定的吸收峰，这些峰来自MBG并且在修饰过程中并没有发生改变。这些峰包括波长613 cm⁻¹处的P-O键的伸缩振动吸收峰，波长1112和797 cm⁻¹处的Si-O-Si基团的伸缩振动吸收峰，以及波长3490、1625和1376 cm⁻¹处的-OH基团的弯曲振动吸收峰。此外，在MBG表面修饰氨基后，在波长1503 cm⁻¹处出现了-NH₂基团的弯曲振动吸收峰，证明了MBG被成功的氨基化。在化学接枝TK以及被CNPs覆盖后，-CH₃基团的不对称伸缩振动吸收峰出现在了波长2875 cm⁻¹处，而在波长1680 cm⁻¹处有酰胺键中C = O键的面外弯曲振动吸收峰。此外，波长1560和1402 cm⁻¹处的振动峰则来自MBG表面CNPs的-COOH基团伸缩振动吸收峰。

Zeta电位测试结果进一步证实了表面化学基团的变化。结果如 图4(c) ，整个枝接的过程可与电负性的变化一一对应。众所周知，纯MBG的表面存在丰富的Si-OH，其表面电位值为−4.63 ± 0.39 mV。由于-NH₂具有正电性，所以在氨基功能化后使得表面电位升至+27.33 ± 2.05 mV。对于TK而言，其两端带有-COOH基团，一端与-NH₂结合，另一端暴露在粉体表面从而进一步使得电位值显著下降至−17.67 ± 2.05 mV。最后随着CNPs在MBG表面的覆盖，电位有所上升，但由于CNPs表面存在羟基基团，因此电位依然为负值。

从 图4(d1) 中可以看出，MBG粉体的N₂吸脱附曲线和孔径分布曲线显示出典型的IV型等温线，这表明粉体具有多孔结构。由于介孔孔道相关的毛细管缩聚作用产生了H1型滞后环，曲线在P/P0 = 0.4~0.8之间有明显突跳，这表明粉体具有介孔孔道，即介孔结构。利用BET中的模型对MBG粉体比表面积进行计算，结果显示，比表面积从199.23 m²/g逐渐下降为82.45 m²/g。孔容也随修饰在0.32~0.15 cm³/g范围内呈下降趋势，平均孔径也从4.23 nm减小到3.62 nm左右。产生这种现象的原因是由于接枝分子占据中孔内部空间从而导致了一系列的变化。

从图4(d2)中可以看出，CNPs锚定后的粉体N₂吸脱附曲线和孔径分布曲线发生了变化。IV型等温线并没有出现明显的饱和吸附平台，回滞环转变为H4型回滞环，这表明孔结构变得不规整。这种不规整的孔结构可能是由于CNPs在MBG表面的覆盖形成了狭缝孔和原有的介孔混合存在导致的。另外，随着CNPs锚定量的增加，粉体的比表面积和孔容逐渐下降，这表明锚定过程对粉体的孔结构产生了影响。

从 图5(a1)~(a3) 可以观察到，MBG的介孔孔道呈现出有序平行的结构(P6 mm)，经过修饰和化学接枝后，成功保留了介孔结构。然而，化学修饰后孔道内部出现阴影，衬度差异明显，孔道尺寸显著减小，这与之前通过解吸数据和BJH模型计算得到的结果一致。从 图5(b1)~(d1) 可以清楚地看出，MBG表面被明显的覆盖层所包裹，导致介孔孔道变得模糊，形成了狭缝孔，这与 图5(d2) 中N₂吸脱附曲线的结果相吻合。通过高分辨率观察( 图5(b2)~(d3) )，可以看到各组MBG表面均匀分布着CNPs，颗粒尺寸与锚定反应前相比没有明显变化，并且晶格条纹清晰可见。

图5. MBG 修饰及在不同浓度CNPs锚定反应前后的TEM图：(a1~a3) MBG，MBG-NH₂，MBG-TK；(b1~b3) 1CNPs@MBG；(c1~c3) 2CNPs@MBG；(d1~d3) 3CNPs@MBG