目的:探讨口腔菌群与原发性肝癌的关系。方法:通过16S rRNA高通量测序技术分析10例原发性肝癌患者及10例健康体检者口腔菌群微生物多样性。结果:在门水平,与健康组相比肝癌组厚壁菌门丰度显著升高(P = 0.005),变形菌门丰度显著降低(P = 0.041)。在属水平,肝癌组链球菌属丰度显著升高(P = 0.023),梭杆菌属、拟普氏菌属、普氏菌属丰度显著降低(P = 0.019, P = 0.041, P = 0.028)。结论:原发性肝癌患者存在口腔菌群失调,其中链球菌属丰度显著升高,梭杆菌属、拟普氏菌属、普氏菌属丰度显著降低,能够作为生物标志物辅助原发性肝癌的早期诊断。 Objective: To investigate the relationship between oral microflora and primary hepatic carcinoma. Methods: 16S rRNA high-throughput sequencing and bioinformatic analysis were used to examine oral bacterial diversity in the different patients including 10 patients with primary hepatic carci-noma, and 10 healthy controls. Results: At the phylum level, the proportion of Firmicutes was in-creased significantly (P = 0.005), however, the proportion of Proteobacteria was decreased signifi-cantly in L group (P = 0.041). At the genus level, the proportion of Streptococcus was increased sig-nificantly (P = 0.023), whereas the proportion of Fusobacterium, Alloprevotella and Prevotella de-creased significantly in L group (P = 0.019, P = 0.041, P = 0.028). Conclusion: The statistical analyses confirmed that there are significant differences between every two groups in one phylum and three genera, which could be used for biomarkers in diagnosis of primary hepatic carcinoma.
目的:探讨口腔菌群与原发性肝癌的关系。方法:通过16S rRNA高通量测序技术分析10例原发性肝癌患者及10例健康体检者口腔菌群微生物多样性。结果:在门水平,与健康组相比肝癌组厚壁菌门丰度显著升高(P = 0.005),变形菌门丰度显著降低(P = 0.041)。在属水平,肝癌组链球菌属丰度显著升高(P = 0.023),梭杆菌属、拟普氏菌属、普氏菌属丰度显著降低(P = 0.019, P = 0.041, P = 0.028)。结论:原发性肝癌患者存在口腔菌群失调,其中链球菌属丰度显著升高,梭杆菌属、拟普氏菌属、普氏菌属丰度显著降低,能够作为生物标志物辅助原发性肝癌的早期诊断。
原发性肝癌,高通量核苷酸测序,口腔菌群
Longfei Cao, Xiaoying Ma, Lin Xu*
Department of Gastroenterology, Qingdao Municipal Hospital, Qingdao University, Qingdao Shandong
Received: Apr. 28th, 2023; accepted: May 21st, 2023; published: May 31st, 2023
Objective: To investigate the relationship between oral microflora and primary hepatic carcinoma. Methods: 16S rRNA high-throughput sequencing and bioinformatic analysis were used to examine oral bacterial diversity in the different patients including 10 patients with primary hepatic carcinoma, and 10 healthy controls. Results: At the phylum level, the proportion of Firmicutes was increased significantly (P = 0.005), however, the proportion of Proteobacteria was decreased significantly in L group (P = 0.041). At the genus level, the proportion of Streptococcus was increased significantly (P = 0.023), whereas the proportion of Fusobacterium, Alloprevotella and Prevotella decreased significantly in L group (P = 0.019, P = 0.041, P = 0.028). Conclusion: The statistical analyses confirmed that there are significant differences between every two groups in one phylum and three genera, which could be used for biomarkers in diagnosis of primary hepatic carcinoma.
Keywords:Primary Hepatic Carcinoma, High-Throughput Nucleotide Sequencing, Oral Microbiota
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原发性肝癌(Primary Hepatic Carcinoma)是原发于肝脏的上皮性恶性肿瘤,其中超过90%的肝癌为肝细胞癌(hepatocellular carcinoma, HCC) [
口腔微生物组是由细菌、真菌、病毒、古生菌构成的高度复杂和多样的生态系统,它们悬浮在唾液内或附着于组织表面 [
有研究表明胰腺癌与口腔菌群失调、幽门螺杆菌感染、细菌、嗜肝病毒、胰腺内微生物组密切相关。研究显示肠–肝轴的存在影响肝癌的发生 [
如今,原发性肝癌治疗策略有限并缺乏公认的筛查工具用于早期诊断。本研究旨在采用16S rRNA扩增子测序技术研究原发性肝癌患者口腔菌群多样性,为原发性肝癌的早期诊断提供参考。
本研究选取青岛市市立医院2022年1月至2022年12月临床诊断为原发性肝癌的患者10例作为实验组,另选择同时期的健康体检志愿者10例作为对照组,采集以上人群的唾液标本。所有研究对象对本研究均知情同意,本课题获得了青岛市市立医院伦理委员会的审核同意。其中实验组即肝癌组患者用L组表示,对照组即健康组患者用H组表示。排除标准:伴其它系统重大疾病;有牙科病史和口腔检查发现有活动性牙龈或牙周病;合并慢性腹泻、炎症性肠病;有胃肠道手术史;近4周内使用过抗生素、PPI或益生菌。
所有研究对象唾液标本收集时间为上午6点至12点,要求研究对象至少在标本收集2小时前不进食、不饮水、不刷牙,清水漱口后手持无菌、无酶冻存管,口含唾液至少1 min,随后使唾液流入试管中,重复多次直到收集的唾液达到2~5 mL,2 h内送至实验室−86℃冰箱保存。
使用TGuide S96磁珠法土壤/粪便基因组DNA提取试剂盒完成核酸的提取,使用酶标仪(基因有限公司GeneCompang Limited,synergy HTX)对核酸进行浓度检测,下一步进行扩增检测,扩增后PCR产物使用浓度1.8%的琼脂糖进行电泳检测(北京博美富鑫科技有限公司)对完整性进行检测,使用NanoDrop 2000 (Themo Scientific, USA)测定DNA浓度和纯度。使用引物338F和806R (338F 5’-ACTCCTACGGGAG GCAGCA-3’/806R 5’-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3’)进行PCR扩增。其操作流程为:(1) 目标区域PCR,(2) Solexa PCR,(3) Nanodrop定量及混样,(4) 过柱纯化,(5) 切胶回收。使用Illumina公司的Novaseq6000平台进行测序,测序类型为PE250。高通量测序文库的构建和基于IlluminaNovaseq6000平台的测序任务由北京百迈客生物科技有限公司(北京,中国)完成。
首先使用Trimmomatic (version 0.33)对原始数据进行质量过滤,然后使用Cutadapt (version 1.9.1)进行引物序列的识别与去除,其后使用USEARCH (version 10)对双端reads进行拼接并去除嵌合体(UCHIME, version 8.1),最终得到高质量的序列用于后续分析。
采用QIIME2软件对各样本进行Alpha多样性指数分析,得到各样本物种丰富度和均匀度信息;计算Unifrac距离,进行Beta多样性指数组间差异分析,直观展示不同样本和分组之间的群落结构差异;将高质量序列划分OTU进行物种注释及分类学分析,得到门(Phylum)、属(Genus)分类水平上的物种分布柱状图;基于组间样品LEfSe分析,在不同组间寻找具有统计学差异的Biomarker;基于16S功能基因进行预测分析。使用R软件将分析结果绘制成图。
应用SPSS 26.0进行统计学处理,对所有入选的各组计量资料进行正态检验,计量资料表示用均数±标准差或中位数M。符合正态分布且方差齐性两组比较采用t检验,不符合正态分布两组采用Wilcoxon符号秩和检验;计数资料两两比较采用卡方检验或Fisher精确检验。P < 0.05为差异有统计学意义。
本研究经过纳入、排除标准筛选后,最终纳入肝癌组(L group)患者10例,健康组(H group)患者10例。两组之间在年龄、性别、体质指数(BMI)指标上无显著差异,在指标血清白蛋白(ALB)、谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、总胆红素(TBIL)及凝血酶原时间(PT)差异显著(表1)。
通过16S rRNA扩增子测序,一共得到1,564,091对Reads,经过双端Reads质控、拼接后共产生1,559,016条Clean Reads,每个样本至少产生44,376条Clean Reads(平均产生77,951条Clean Reads)用于数据分析,每个序列平均有420个碱基对(390~450 bp)。两组一共测得3973个独一无二的序列,代表了口腔中存在的所有菌种,两组样本覆盖率(Coverage)均大于99%。
指标 | H组(n = 10) | L组(n = 10) | 统计值 | P值 |
---|---|---|---|---|
性别(男/女) | 5/5 | 9/1 | - | 0.141 |
年龄(岁) | 57.00 ± 16.99 | 56.80 ± 8.13 | t = 0.034 | 0.974 |
BMI (kg/m2) | 24.40 ± 3.42 | 24.19 ± 3.35 | t = 0.139 | 0.891 |
ALB (g/L) | 38.53 ± 1.67 | 32.18 ± 4.42 | t = 4.249 | 0.001 |
ALT (U/L) | 15.4 (6.74~75.75) | 57.10 (17.67~300.86) | z = −2.65 | 0.008 |
AST (U/L) | 19.17 (10.92~54.57) | 63.02 (27.84~277.56) | z = −3.33 | 0.001 |
TBIL (umol/L) | 10.95 (7.90~14.30) | 36.85 (13.60~187.70) | z = −3.63 | 0.000 |
PT (s) | 12.30 (10.60~13.60) | 14.40 (12.00~19.70) | z = −3.02 | 0.003 |
表1. 各组基本特征对比
健康组共有OTU 2101个,肝癌组共有OTU 2494个,两组样品共有622个OTU相互重叠,而肝癌组有1872个OTU在健康组中不存在,健康组中有1479个OTU在肝癌组中不存在(图1)。
图1. 基于OTU的韦恩图
为了探究肝癌组和健康组中口腔微生物的Alpha多样性,基于秩和检验,计算Chao1、ACE、Shannon、Simpson指数,R语言可视化结果显示,肝癌组与健康组相比,α多样性指数均有降低的趋势,但差异无统计学意义 (P > 0.05;图2)。
在加权的PCoA图中肝癌组与健康组明显分离,说明使用PCoA分析可以清楚地分出肝癌组和健康组的口腔微生物群。Anosim (analysis of similarities)分析是用于分析多维度数据组间相似性的统计方法,Anosim检验表明肝癌组与健康组之间群落构成有显著差异(R = 0.229,P = 0.001;图3)。
图2. α多样性指数组间差异箱线图
图3. 基于主成分1和2的Weighted PCoA图
在门水平上口腔菌群主要由厚壁菌门(Firmicutes)、变形菌门(Proteobacteria)、拟杆菌门(Bacteroidota)、梭杆菌门(Fusobacteriota)组成。其中肝癌组厚壁菌门丰度显著高于健康组(P = 0.005),变形菌门丰度显著低于健康组(P = 0.041),拟杆菌门、梭杆菌门丰度则均降低,差异不显著。在属水平上排名前五的是韦荣球菌属(Veillonella)、奈瑟菌属(Neisseria)、链球菌属(Streptococcus)、普氏菌属(Prevotella)、嗜血杆菌属(Haemophilus),其中肝癌组链球菌属丰度明显高于健康组(P = 0.023),梭杆菌属、拟普氏菌属、普氏菌属丰度显著低于健康组(P = 0.019,P = 0.041,P = 0.028;图4)。
如图5,LEfSe分析的结果显示在门水平上肝癌组厚壁菌门(Firmicutes)的丰度显著高于健康组,Patescibacteria、变形菌门(Proteobacteria)的丰度显著低于健康组;在纲水平上芽孢杆菌纲(Bacilli)、放线菌纲(Actinobacteria)的丰度显著高于健康组,Gracilibacteria、梭菌纲(Clostridia)、γ-变形菌纲(Gammaproteobacteria)的丰度显著低于健康组;在目水平上乳杆菌目(Lactobacillales)的丰度显著高于健康组,Absconditabacteriales_SR1丰度显著低于健康组;在科水平上链球菌科(Streptococcaceae)的丰度显著高于健康组,梭杆菌科(Fusobacteriaceae)的丰度显著低于健康组;在属水平上链球菌属(Streptococcus)的丰度显著高于健康组,而拟普氏菌属(Alloprevotella)、梭杆菌属(Fusobacterium)的丰度显著低于健康组。上述结果与物种组成分析结果一致,可以作为Biomaker为原发性肝癌的早期诊断提供参考。
根据PICRUSt2 (Phylogenetic Investigation of Communities by Reconstruction of Unobserved States)菌群基因功能预测结果,比较两组口腔菌群的KEGG通路,并筛选出具有显著性组间差异的通路。如图6所示,左侧横向柱状图代表已筛选代谢通路的丰度分别占两组样本中所有代谢通路的百分比,右侧为功能通路丰度在95%CI内的差异比例,右边为P值。在第三级KEGG通路层次,与健康组相比,肝癌组在异生物素的生物降解和代谢途径、传染性疾病相关途径、肿瘤相关途径方面均升高。
图5. 健康组与肝癌组口腔菌群LEfSe分析进化分枝图;LDA值分布柱状图
图6. H组和L组间KEGG代谢途径差异分析图
口腔和胃肠道在人体内形成了微生物共生的微环境,二者虽是各自独立的,但也互相依存和影响 [
本研究通过16S rRNA扩增子测序技术分析原发性肝癌患者和健康人群口腔菌群微生物多样性,研究结果显示肝癌组较健康组Alpha多样性指数降低,但无显著差异,与现有研究结论不一。Li等 [
物种组成分析显示,肝癌组与健康组之间群落构成相同,但相对丰度不同,这意味着肝癌已经改变了患者的口腔菌群。其中与健康组相比肝癌组厚壁菌门丰度显著升高,变形菌门丰度显著降低。厚壁菌门增加可以引起口腔菌群紊乱、黏膜防御功能下降,从而导致口腔致病菌向胃肠道转移。变形菌门门下的细菌均为革兰氏阴性菌,以兼性厌氧菌为主,受环境影响大,与肥胖、糖尿病、消化性溃疡、炎症性肠病有关 [
慢性乙肝病毒感染患者,如乙型肝炎、乙肝肝硬化、肝癌患者对乙肝病毒的免疫应答减弱,受损的免疫系统对这种病毒的反应减弱导致了慢性感染 [
本研究缺少慢性乙肝病毒感染各发病阶段的口腔菌群分析,查阅相关文献发现,Ling等 [
口腔菌群方便提取易操作,通过高通量测序技术发现微生物群落的变化,推测其功能改变,可以用于预测疾病的发生和发展,为疾病的诊断提供参考。然而不可否认本研究仍存在诸多局限:首先,本研究仅分析了肝癌患者和健康者口腔这一特定部位的菌群构成,而研究对象的肠道菌群未能同时分析,因此,现有数据不足以建立起口腔菌群与肠道菌群的直接联系,只能推测出肝癌患者口腔菌群的关键种型改变可能导致肠道菌群的变化。其次,原发性肝癌和口腔菌群间的相关性及其中机制尚不明确,口腔菌群失衡是肝细胞癌的“因”还是“果”,还需进一步研究。再次,本研究未分析非乙肝病毒感染的肝癌患者口腔菌群构成,例如酒精性肝病、非酒精性脂肪性肝病、自身免疫性肝炎等。最后,本研究样本量较少,慢性乙肝病毒感染各阶段的大样本分析将使结果更具有说服力。
原发性肝癌患者存在口腔菌群失调,其中链球菌属丰度显著升高,梭杆菌属、拟普氏菌属、普氏菌属丰度显著降低,能够作为生物标志物辅助原发性肝癌的早期诊断。
曹龙飞,马晓莹,许 琳. 原发性肝癌患者口腔菌群多样性研究Study on the Diversity of Oral Microflora in Patients with Primary Hepatic Carcinoma[J]. 临床医学进展, 2023, 13(05): 8804-8813. https://doi.org/10.12677/ACM.2023.1351230
https://doi.org/10.3322/caac.21660
https://doi.org/10.1016/j.cden.2016.11.002
https://doi.org/10.1186/s12866-017-1064-9
https://doi.org/10.1126/science.aan4236
https://doi.org/10.1126/science.aan4526
https://doi.org/10.1136/gutjnl-2017-315084
https://doi.org/10.1111/1462-2920.12502
https://doi.org/10.1016/j.tibtech.2015.06.011
https://doi.org/10.1038/s41598-017-01751-y
https://doi.org/10.1002/hep.26695
https://doi.org/10.1038/s41579-021-00559-y
https://doi.org/10.1002/hep.20649
https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2014.09.017
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110449
https://doi.org/10.1186/1755-8794-4-22
https://doi.org/10.1038/srep17098