HJBM Hans Journal of Biomedicine 2161-8976 Scientific Research Publishing 10.12677/hjbm.2011.12007 HJBM-306 HJBM20110200000_67793102.pdf 医药卫生 PD98059对H2O2诱导的人乳腺癌细胞凋亡及相关蛋白的影响 The Effect of the PD98059 on H2O2 Induced Apoptosis and Associated Proteins of Human Breast Cancer Cells 钱梅 1 式兵 1 null 28 10 2011 01 02 39 44 Sep. 17th, 2011 Sep. 28th, 2011 Sep. 29th, 2011. © Copyright 2014 by authors and Scientific Research Publishing Inc. 2014 This work is licensed under the Creative Commons Attribution International License (CC BY). http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

目的:探讨细胞外信号调节激酶的上游激酶(MEK)抑制剂PD98059对H2O2诱导的人乳腺癌MCF-7细胞凋亡的影响及其作用机制。方法:H2O2诱导乳腺癌MCF-7细胞凋亡,PD98059干预其细胞凋亡。荧光染料吖啶橙(AO)观察细胞凋亡的形态学变化;流式细胞术法进行凋亡细胞计数;Western blot法检测p53,PCNA,caspase-3、caspase-9和Bcl-2的表达。结果:H2O2刺激细胞4 h、12 h,明显诱导了MCF-7细胞凋亡。PD98059将H2O2诱导的细胞凋亡率分别降低了约4%、14%,与H2O2刺激细胞12 h比较,具有显著的统计学差异(P < 0.05)。H2O2显著提高了p53蛋白的表达,激活了caspase-3与caspase-9蛋白,降低了Bcl-2的表达,而PD98059逆转了H2O2的刺激效应,下调了H2O2导致的p53与PCNA蛋白表达,降低了caspase-3与caspase-9蛋白活性,上调了Bcl-2蛋白表达。结论:MEK抑制剂PD98059抑制了H2O2诱导的MCF-7细胞凋亡,其作用机制与其降低了p53和PCNA蛋白表达和caspase-3与caspase-9蛋白活性以及增加Bcl-2蛋白表达有关。
Objective: to study the effect of MEK inhibitor of PD98059 on apoptosis induced by H2O2 and its mechanisms in human breast cancer MCF-7 cells. Methods: H2O2 inducing apoptosis in MCF-7 cells was set to observe apoptosis and its associated proteins treated in the present or absent of PD98059. The cellular morphology was investigated by AO staining. Apoptosis ratio was analyzed by flow cytometry. The expres-sions of p53, PCNA, caspase-3, caspase-9 and Bcl-2 were observed using Western blot analysis. Results: apoptosis was observed with cells treated H2O2 for 4 or 12 h while the degree of apoptosis was greatly de-creased by 4% or 14% in MCF-7 cells treated with H2O2 and PD98059 together. There was significantly dif-ference between with the treatment of H2O2 and PD98059 in the presence of H2O2 for 12 h (P < 0.05). The increased p53, activated caspase-3 and caspase-9 and decreased Bcl-2 were appeared with H2O2 treatment. However, the levels of p53 and PCNA were downregulated, the extent of caspase-3 and caspase-9 activation was decreased, and the level of Bcl-2 was upregulated in MCF-7 cells treated with PD98059 in the presence of H2O2. Conclusions: MEK inhibitor of PD98059 inhibited apoptosis by downregulating the levels of p53 and PCNA, decreasing the activation of caspase-3 and caspase-9 and upregulating the level of Bcl-2 in MCF-7 cells.

PD98059;MEK;MCF-7;细胞凋亡, PD98059; MEK; MCF-7; Apoptosis
1. 引言

丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases, MAPKs)是细胞内的一类丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,其是信号从细胞表面传导到细胞核内部的重要传递者,参与多种细胞功能的调控,尤其是在细胞增殖、分化与凋亡中,起着关键作用[ 1 ]。各种生长因子及细胞因子的信号传递大多通过MAPK信号通路来进行[2,3]。细胞外信号调节激酶的上游激酶(MEK)是其中重要的一环,具有酪、苏氨酸激酶活性,通过活化其下游的细胞外信号调节激酶(ERK),调节相关蛋白的表达,影响细胞的增殖、分化及凋亡。本文拟运用MEK特异性抑制剂PD98059探讨其对人乳腺癌MCF-7细胞凋亡的影响,及其对相关蛋白的调节。

2. 材料与方法 2.1. 主要材料

MCF-7细胞由中国科学院健康所荆清课题组惠赠。PD98059购自美国Biomol公司。H2O2购自美国sigma公司。RPMI 1640培养基购自美国GIBCO公司。胎牛血清(FBS)购自美国PAA公司。牛胰岛素(Insulin)购自Sigma公司。p53(FL-393)、PCNA抗体均购自美国Santa Cruz公司。

2.2. 方法 2.2.1. 溶液的配制

以少量二甲亚砜(DMSO)溶解PD98059粉末,配制成6.5 mg/ml溶液(储存液),分装置–20℃避光保存,临用时稀释成所需浓度(DMSO终浓度 < 0.1%)。H2O2以去离子水溶解,配制成10 mmol/L溶液(储存液),置4℃避光保存。

2.2.2. 细胞培养

MCF-7细胞种植在RPMI 1640培养基(含10% FBS,0.01 mg/ml Insulin,100 U/ml青链霉素混合液,20 mmol/LHEPES)中,细胞在37℃ 5% CO2环境中单层生长。

2.2.3. 荧光染料吖啶橙(AO)的细胞形态学观察

取对数生长期的人乳腺癌MCF-7细胞,接种于60 mm培养皿中。24 h后加入终浓度为200 μmol/L H2O2预处理细胞2 h后换新鲜培养液,再加入终浓度为80 μmol/L PD98059,分别于4 h、12 h后收集细胞,同时设同样条件下单独应用200 μmol/L H2O2、80 μmol/L PD98059及未经药物处理的空白对照组。PBS液洗涤2遍,制成活细胞悬液,调整细胞浓度为1 × 106/ml,取95 μl细胞悬液与5 μl吖啶橙溶液(100 μg/ml)混匀,吸1滴混合液点于洁净玻片上,直接用盖玻片封片,荧光显微镜观察,摄片。

2.2.4. 流式细胞仪的检测

取对数生长期的人乳腺癌MCF-7细胞,细胞处理同2.2.3中描述。适时观察,收集细胞,以不含EDTA的0.25%的胰酶进行消化。冷PBS洗细胞2次。将细胞转移至1.5 ml的离心管中。将对照组的细胞分为4管,每管中细胞浓度约1 × 106/ml。每管以400 ml 1 × 结合缓冲液悬浮。其中,一管为空白对照、一管为Annexin V单染、一管为PI单染、一管为Annex in V和PI 双染。染色法为加5 ml Annex in V-FITC,轻轻振荡混匀,4℃避光染色15 min。加10 ml PI染液,混匀,4℃避光染色5 min。药物处理过的细胞,以400 ml 1 × 结合缓冲液悬浮,再进行双染,上流式细胞仪进行。具体实验操作按照CELL LAB AposcreenTM Annexin V-FITC Apoptosis Kit试剂盒(BECKMAN COULTER)进行。

2.2.5. Western免疫印迹

提取对照组和用药干预后的细胞总蛋白,Bradford法定量后制备western上样样品,进行SDS-PAGE电泳。电泳后,剪取与凝胶大小一致的PVDF膜及滤纸,浸于Transfer buffer中10 min,按下列顺序放置于Bio-Rad半干电转移装置上:正极 ® 滤纸 ® PVDF膜 ® 凝胶 ® 滤纸 ® 负极,15 V稳压转移30 min。5%脱脂奶粉室温封闭1 h,弃去封闭液,加入一抗(用TBST稀释),4℃反应过夜。次日,洗膜后加入二抗,室温反应1 h,洗膜后加入ECL显色液,读片。

2.2.6. 统计学分析

实验结果数据以表示,两均数的比较用t检验,P < 0.05,表示具有显著的统计学意义。

3. 结果 3.1. H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>及PD98059干预后细胞形态学变化及其诱导的细胞凋亡率

AO荧光染色对细胞凋亡的形态学观察实验结果如图1所示,正常细胞核结构正常、均呈绿色荧光(图1(A)),200 μmol/L H2O2处理细胞4 h、12 h后,荧光显微镜下观察到典型的细胞凋亡特征性变化,凋亡细胞胞核呈固缩状的或半月形绿色荧光或橘黄色荧光(图1(B,E)),与经H2O2处理组比较,80 μmol/L PD98059干预细胞4 h、12 h后,凋亡细胞减少。流式细胞仪检测的细胞凋亡率如图2所示,H2O2刺激细胞4 h、12 h,诱导的细胞凋亡率分别为19.59%、25.98%,而PD98059将其凋亡率分别降低了约4%、14%,与H2O2刺激细胞12 h比较,具有显著的统计学差异(P < 0.05)。

3.2. PD98059对p53、PCNA蛋白表达的影响

对p53、PCNA蛋白的实验结果如图3所示,与未经H2O2及PD98059处理的对照组比较,200 μmol/L H2O2处理细胞4 h、12 h后明显诱导了p53蛋白的表达,而80 μmol/L PD98059下调了经H2O2刺激的MCF-7细胞中p53蛋白表达,PD98059单独运用12h则完全抑制了p53蛋白的表达。与未经H2O2及PD98059处理的对照组比较,单独运用PD98059抑制了PCNA的表达,而其余各组均未明显变化。

3.3. PD98059对caspase-3,caspase-9及Bcl-2蛋白的影响

200 μmol/L H2O2刺激MCF-7细胞4 h、12 h均激活了caspase-3与caspase-9的活性,降低了Bcl-2的表达。80 μmol/L PD98059降低了经200 μmol/L H2O2刺激下的MCF-7细胞中caspase-3与caspase-9的活性,增加了该细胞中Bcl-2蛋白的表达。单独运用PD98059干预细胞12 h则完全抑制了caspase-3与caspase-9的活性,增加了Bcl-2蛋白的表达(图4)。

4. 讨论

乳腺癌的发生发展涉及到一系列信号转导分子活性的改变。研究表明,丝裂原活化蛋白激酶通路之一的细胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)/丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)信号传导途径在乳腺癌的发生和发展中起着重要的作用。信号转导通路的异常活化能够导致细胞丧失凋亡和分化的能力,促使细胞恶性转化,异常增殖,产生肿瘤,并能进一步促进肿瘤细胞的增殖[ 4 ]。从H2O2介导细胞凋亡的机制来看,H2O2主要损伤细胞的膜性结构,暴露出来的膜结构成份磷脂酰丝氨酸(PS)[ 5 ],是吞噬细胞识别和吞噬凋亡细胞的靶点。因此H2O2作为ROS族被认为是诱导细胞凋亡的重要因素,可作为细胞内信号转导分子参与细胞凋亡的发生[6,7]。本研究探讨MEK特异性抑制剂PD98059对H2O2诱导的乳腺癌MCF-7细胞凋亡的影响及其作用机理。

p53是重要的肿瘤抑制因子,p53通过参与细胞内的信号转导通路,调节细胞的正常生命活动,包括细胞周期,细胞增殖,细胞凋亡等[ 8 ]。p53与细胞凋亡的调控密切相关[ 9 ],野生型p53的功能象“分子警察”监控着细胞基因组的完整性,如果细胞DNA受损,p53基因产物累积,诱导细胞进入G1静止期,启动修复系统进行修复。若修复失败,p53基因产物可诱导凋亡来触发细胞死亡。p53蛋白作为转录因子,通过阻止细胞复制和发动细胞凋亡——保持基因的稳定性,维持细胞正常生长,抑制恶性增殖,对细胞生长起负调节作用。

PCNA是DNA聚合酶的辅助蛋白,是细胞周期所必需的物质,又称周期蛋白。PCNA在细胞增殖调控上起着促进DNA合成的重要作用,是评价细胞增殖状态的客观指标[ 10 ]。研究表明[ 11 ],正常乳腺组织中PCNA表达率较低,随不典型增生的加重表达率增高。众所周知,野生型p53可抑制肿瘤的发生,而p53基因突变或缺失与多种肿瘤的发生密切相关。当p53基因突变时,就失去了对细胞生长繁殖调控的功能,使细胞通过G1期进入S期,导致PCNA高表达。可见p53蛋白的失活,对增殖细胞核抗原PCNA的调控作用明显减弱,使其表达增强,乳腺癌细胞趋向于大量增殖[ 12 ]

本研究用200 μmol/L H2O2刺激细胞,诱导了细胞凋亡,同时诱导了细胞中p53蛋白的表达,这与先前的研究结果一致[13,14]。实验结果显示,H2O2刺激

图1. PD98059对H2O2分别于4 h、12 h刺激的MCF-7细胞中细胞形态学变化。(A) 未经H2O2及PD98059处理的对照组(×400); (B) H2O2处理细胞4 h(×400); (C) H2O2+ PD98059干预细胞4 h(×400); (D) PD98059干预细胞4 h(×400); (E) H2O2处理细胞12 h(×400); (F) H2O2+ PD98059干预细胞12 h(×400); (G) PD98059干预细胞12 h(×400)。实验结果重复3次

图2. PD98059对H2O2分别于4 h、12 h刺激的MCF-7细胞中细胞凋亡率的影响。*,P < 0.05,与H2O2刺激MCF-7细胞12 h比较。实验数据以x±s表示(n = 3)

图3. PD98059对H2O2分别于4 h、12 h刺激的MCF-7细胞中p53和PCNA蛋白的影响,实验结果重复3次

图4. PD98059对H2O2分别于4 h、12 h刺激的MCF-7细胞中凋亡相关蛋白caspase-3、caspase-9与Bcl-2的影响,实验结果重复3次

MCF-7细胞4 h、12 h均可诱导细胞凋亡,且刺激了MCF-7细胞中p53的高表达,当其与PD98059联合应用时,下调了p53的表达。且当单独运用PD98059时p53的表达被抑制的更明显,PD98059干预细胞12 h时则完全抑制了MCF-7细胞中p53的表达。这可能与H2O2的氧化应激反应诱导了p53介导的细胞凋亡,而PD98059对其起到了抑制作用有关。同时,PD98059干预细胞12 h时下调了PCNA的表达,而其他各组均未明显影响PCNA的表达,这可能与PD98059抑制细胞增殖有关,其具体的作用机制有待进一步研究。

细胞凋亡从内外多因子复杂的相互作用诱导产生凋亡信号,传递至caspase并使其活化开始,以蛋白底物裂解、细胞解体为结局,从而使细胞凋亡得以完成。线粒体释放的细胞色素C能与Apaf-1及caspase-9形成一个复合体,在dATP、ATP存在下活化caspase-3、caspase-6、caspase-7等成员,使凋亡进行下去[ 15 ]。细胞凋亡受各种内外信号的影响调控,或抑制或诱导细胞凋亡,Bcl-2是凋亡研究中最受重视的癌基因之一。有研究表明caspase-3能裂解Bcl-2蛋白,在体外从过表达caspase-3的细胞中发现Fas配体诱导细胞凋亡时,caspase能在Bcl-2蛋白环状区域的Asp34处裂解Bcl-2蛋白。

本研究发现,经H2O2刺激的MCF-7激活了caspase-3与caspase-9蛋白,下调了Bcl-2的表达,而PD98059则降低了H2O2的效应,即PD98059降低了caspase-3与caspase-9的活性,提高了Bcl-2蛋白的表达。可见,H2O2通过caspase-3、caspase-9及Bcl-2途径诱导的细胞凋亡被PD98059阻断。

5. 结论

综上所述,本研究证实了H2O2可诱导细胞凋亡,同时可刺激细胞中凋亡相关蛋白p53的高表达,激活caspase-3与caspase-9蛋白,降低Bcl-2水平。MEK特异性抑制剂PD98059则抑制了胞凋亡,同时抑制了细胞中p53的表达,且其下调了细胞中PCNA的表达,降低了caspase-3与caspase-9的活性,提高了Bcl-2蛋白的表达。提示在人乳腺癌MCF-7细胞中p53、PCNA及其凋亡相关蛋白caspase-3、caspase-9与Bcl-2的表达可能与MEK通路有关。

6. 致谢

感谢上海市教委E-研究院中医内科建设计划资助项目(E03008)、上海市教委预算内科研项目(2010JW28)给予的资助。

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